TECNICAS Y EQUIPOS DISPONIBLES
Técnicas instrumentales: cromatografía (TLC, GC, GC-MS, HPLC/UV); espectrofotometría (UV, visible y absorción atómica), espectrofluorimetría; texturometría, extractores con CO² líquido.
Análisis matemático multivariante de grandes masas de datos; gestión informática; programación de bases de datos; grafismo científico.
Análisis polínico y de partículas en suspensión en el aire, agua y productos naturales.
Análisis químico de aguas in situ y análisis automático: oxígeno, metales, conductividad y otros parámetros físicos y químicos. Indices bióticos.
Laboratorios para cultivos celulares con equipos de citofluorimetría y espectrofotometría visible para placas, etc.
Instalaciones para estabulación y experimentación animal in vivo en condiciones controladas (temperatura, humedad, ciclo oscuridad-luz, filtros HEPA) y acceso restringido. Posibilidad de trabajo con diversas especies animales según principios de BPL (rata, ratón, cobaya, conejo, hurón, cerdo, mini-pig, marmotas, tupayas, perros, corderos, primates y otros). Quirófanos experimentales.
Laboratorios de análisis bioquímicos y serológicos (precipitación, ELISA) y hematológicos, de histotecnia (fijación, inclusión y microtomía) para microscopía de luz y electrónica e histología especial (inmunocitoquímica, histoquímica enzimática e hibridación in situ).
Laboratorios de biología molecular: PCR, Northern- y Western-blot, síntesis de oligonucleótidos, secuenciación de DNA; purificación y preparación de antígenos; laboratorio de técnicas radiactivas.
Laboratorios de Fisiología Vegetal y Fitopatología: analizadores de CO2 por infrarrojos; radiómetros; evaluación del estado hídrico de suelos y plantas; intercambio de gases (CO2 y H2O) análisis del crecimiento y producción vegetal; análisis bioquímico (actividad enzimática, metabolitos, hormonas); cámaras de cultivo in vitro; fitotrones con control de temperatura, humedad relativa, luz y niveles de CO2; invernaderos climatizados (control de temperatura, humedad relativa y luz).
Laboratorio de Microbiología de alimentos y aguas: sala de recepción de muestras (frigoríficos y congeladores); sala de preparación de medios (autoclaves, pH-metro, balanzas, manta eléctrica); sala de procesado de muestras (cabina de flujo laminar, stomacher, baños termostáticos, micropipetas, balanzas, vórtex, centrífuga de sobremesa); sala de incubación (estufas de incubación a 30, 37, 42, 44 y 55 ºC; estufas de refrigeración a 22 y 25 ºC; baño termostático de precisión); sala de pruebas bioquímicas (spectronic, contador de colonias, microscopio, equipos y reactivos para tinciones); sala de descontaminación (autoclave).
Laboratorio de cultivo in vitro para células y tejidos vegetales.
Herbario de 25.000 pliegos y colecciones de referencia zoológicas con 2 millones de ejemplares y 7.000 especies.
Técnicas de captura, marcaje y recuperación, censos, extracción, separación, conservación y archivo (museo) de ejemplares biológicos de todo tipo, terrestres y acuáticos; muestreo en campo, submarino y espeleológico.
Interpretación de fotografías aéreas y análisis de imágenes de satélite. Cartografía asistida por ordenador. Sistemas de Información Geográfica (Atlas GIS, Maplnfo, ArcView).
Tratamiento y análisis de la información contenida en censos, padrones, catálogos industriales y de licencias fiscales, y otras fuentes.
Laboratorios de histotecnia (fijación, inclusión y microtomía) para microscopía de luz y electrónica e histología especial (inmunocitoquímica, histoquímica enzimática e hibridación in situ).
Microscopía de luz (episcópica, UV, polarización, diferencial-interdiferencial, fluorescencia), microscopía electrónica (transmisión y barrido) y análisis de imagen. Macrofotografía y microfotografia.
Sala de análisis sensorial de alimentos. Unidad metabólica: calorimetría directa.
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